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目的:纳米二氧化钛(nanoparticle titanium dioxide,Nario-TiO2)是纳米材料的一种,具有抗紫外线、抗菌、自洁净、抗老化等功效,在化妆品、功能纤维、塑料、油漆等领域广泛使用。通常情况下Nano-TiO2被认为是相对低毒的化合物,但是近来大量研究显示了Nano-TiO2可能会对人体健康产生损害作用。DDT又称滴滴涕,外观为白色晶体,为有机氯农药的一种,在20世纪上半叶人们防治农业病虫害、减轻疟疾伤寒等疾病危害起到了巨大的作用。但DDT在环境中非常难降解,并可能在动物脂肪内蓄积。以Nano-TiO2作为催化剂的光催化降解DDT的方法,因其能在光照的条件下,将DDT完全降解成为无毒的无机物而日益受到人们的关注。Nano-TiO2在降解DDT的过程中,是否会对人体健康产生影响,现有的文献较少。因此,研究Nano-TiO2和DDT的联合作用评估Nano-TiO2对人体健康效应具有非常重要的实用价值。本文拟通过观察不同粒径Nano-TiO2和DDT联合染毒对HepG2细胞抗氧化功能和DNA损伤的影响,探讨不同粒径Nano-TiO2和DDT的毒理学效应,为Nano-TiO2的生物安全性评价提供科学依据。 方法: 1细胞模型的建立:生长良好的HepG2细胞,分别加入1μg/mL的50nm或120nmTiO2,0.1、1、10μ mol/L的DDT,以及上述各浓度的Nano-TiO2和DDT联合作用,1mL/L二甲基亚砜(DMSO)为溶剂对照,细胞染毒时间为24小时。 2细胞形态学观察:通过生物显微镜观察Nano-TiO2和DDT单独或联合作用对HepG2细胞的组织形态的改变。 3细胞活性检测:采用噻唑蓝(MTT)比色法检测Nano-TiO2和DDT单独或联合作用对HepG2细胞存活率的影响。 4细胞氧化损伤的测定:通过检测HepG2细胞内脂质过氧化产物丙二醛(MDA)含量、抗氧化酶超氧化物歧化酶(SOD)活力和谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)活性,评价Nano-TiO2和DDT单独或联合作用对HepG2细胞氧化损伤的影响。 5细胞内活性氧水平的测定:运用2,7-二氢二氯荧光黄双乙酸钠(DCFH-DA)作为荧光探针,采用流式细胞检测技术检测Nano-TiO2与DDT单独或联合作用对HepG2细胞内活性氧(ROS)水平的影响。 6细胞DNA损伤的测定:运用单细胞凝胶电泳试验(SCGE)检测各组DNA损伤,评价Nano-TiO2与DDT单独或联合作用对HepG2细胞DNA损伤的影响。 7细胞DNA修复基因mRNA表达水平的变化:采用聚合酶链式反应(PCR)方法测定DNA修复酶MTH1 mRNA表达水平的变化,评价Nano-TiO2与DDT单独或联合作用对HepG2细胞DNA损伤后修复能力的影响。 结果: 1 Nano-TiO2和DDT对HepG2细胞形态的影响 生物显微镜下观察显示:正常培养的HepG2细胞为菱形,贴壁伸展紧密生长,折光率高,增殖旺盛。经染毒处理后,细胞数减少,细胞皱缩为圆形、折光率减弱,贴壁能力下降,多数脱落漂浮于培养液中。 2 Nano-TiO2和DDT对HepG2细胞存活率的影响 Nano-TiO2和DDT单独及联合作用时,除了DDT0.1μ mol/L组与溶剂对照相比无明显差异外,其余各组细胞存活率降低,各组差异有统计学意义(P<0.05或P<0.01)。 DDT单独作用时,随着浓度的增加,存活率逐渐降低,差异具有统计学意义(P<0.05或P<0.01),有明显的剂量-反应关系,相关系数r为-0.9309。 当DDT为0、0.1、1、10μ mol/L时,50nmTiO2组存活率低于120nmTiO2组,但未见显著性差异(P>0.05)。 Nano-TiO2与DDT联合染毒时,DDT10μ mol/L组的细胞存活率降低,差异具有统计学意义(P<0.05),其余各组未见显著性差异(P>0.05)。 3 Nano-TiO2和DDT对HepG2细胞氧化损伤的影响 3.1细胞内MDA含量的改变 Nano-TiO2和DDT单独及联合作用时,除了DDT0.1μ mol/L组与溶剂对照相比无明显差异外,其余各组均可使MDA含量升高,各组差异有统计学意义(P<0.05或P<0.01)。 DDT单独作用时,随着浓度的增加,MDA含量逐渐升高,差异具有统计学意义(P<0.05或P<0.01),有明显的剂量-反应关系,相关系数r为0.9729。 当DDT为0、0.1、1μ mol/L时,50nmTiO2组MDA含量显著高于120nmTiO2组,差异具有统计学意义(P<0.05或P<0.01);当DDT为10μ mol/L时,50nmTiO2组MDA含量高于120nmTiO2组,但未见显著性差异P>0.05)。 Nano-TiO2与DDT联合染毒时,MDA含量都分别比单独染毒明显升高,差异具有统计学意义(P<0.05或P<0.01)。通过二因子析因分析,二者混合染毒有交互作用(P<0.05)。 3.2细胞内SOD活力的改变 Nano-TiO2和DDT单独及联合作用时,各组均可使SOD活力降低,各组差异均有统计学意义(P<0.05或P<0.01)。 DDT单独作用时,随着浓度的增加,SOD活力逐渐降低,差异具有统计学意义(P<0.05或P<0.01),有明显的剂量-反应关系,相关系数r为-0.8476。 当DDT为0、0.1、0、10μ mol/L时,50nmTiO2组SOD活力显著低于120nmTiO2组,差异具有统计学意义(P<0.05)。 Nano-TiO2与DDT联合染毒时,SOD活力都分别比单独染毒明显降低,差异具有统计学意义(P<0.05或P<0.01)。通过二因子析因分析,二者混合染毒有交互作用(P<0.05)。 3.3细胞内GSH-Px活力的改变 Nano-TiO2和DDT单独及联合作用时,除了DDT0.1μ mol/L组与溶剂对照相比无明显差异外,其余各组均可使GSH-Px活力降低,各组差异有统计学意义(P<0.05或P<0.01)。 DDT单独作用时,随着浓度的增加,GSH-Px活力逐渐降低,差异具有统计学意义(P<0.05或P<0.01),有明显的剂量-反应关系,相关系数r为-0.8571。 当DDT为0、0.1、1、10μ mol/L时,50nmTiO2组GSH-Px活力显著低于120nmTiO2组,差异具有统计学意义(P<0.05)。 Nano-TiO2与DDT联合染毒时,GSH-Px活力都分别比单独染毒明显降低,差异具有统计学意义(P<0.05或P<0.01)。通过二因子析因分析,二者混合染毒有交互作用(P<0.05)。 4 Nano-TiO2和DDT对HepG2细胞内ROS水平的影响 Nano-TiO2和DDT单独及联合作用时,除了DDT0.1μ mol/L组与溶剂对照相比无明显差异外,其余各组均可使ROS水平升高,各组差异有统计学意义(P<0.05或P<0.01)。 DDT单独作用时,随着浓度的增加,ROS水平逐渐升高,差异具有统计学意义(P<0.05或P<0.01),有明显的剂量-反应关系,相关系数r为0.9971。 当DDT为0、0.1μ mol/L时,50nmTiO2组ROS水平高于120nmTiO2组,但未见显著性差异(P>0.05);当DDT为1、10μ mol/L时,50nmTiO2组ROS水平高于120nmTiO2组,差异具有统计学意义(P<0.05)。 Nano-TiO2与DDT联合染毒时,ROS水平都分别比单独染毒明显升高,差异具有统计学意义(P<0.05或P<0.01)。通过二因子析因分析,二者混合染毒有交互作用(P<0.05)。 5 Nano-TiO2和DDT对HepG2细胞DNA损伤的影响 Nano-TiO2和DDT单独及联合作用时,各组均可使Olive尾矩增加,各组差异均有统计学意义(P<0.05或P<0.01)。 DDT单独作用时,随着浓度的增加,Olive尾矩逐渐增加,差异具有统计学意义(P<0.05或P<0.01),有明显的剂量-反应关系,相关系数r为0.8416。 当DDT为0、0.1、10μ mol/L时,50nmTiO2组Olive尾矩大于120nmTiO2组,差异具有统计学意义(P<0.05);当DDT为1μ mol/L时,50nmTiO2组Olive尾矩大于120nmTiO2组,但未见显著性差异(P>0.05)。 Nano-TiO2与DDT联合染毒时,Olive尾矩都分别比单独染毒明显增加,差异具有统计学意义(P<0.05或P<0.01)。通过二因子析因分析,二者混合染毒有交互作用(P<0.05)。 6 Nano-TiO2和DDT对修复基因MTH1 mRNA表达水平的影响 Nano-TiO2和DDT单独及联合作用时,除了50nmTiO2组和120nmTiO2单独处理组与溶剂对照相比无明显差异外,其余各组均可使mRNA表达水平升高,各组差异有统计学意义(P<0.05或P<0.01)。 DDT单独作用时,随着浓度的增加,mRNA表达水平逐渐升高,差异具有统计学意义(P<0.05或P<0.01),有明显的剂量-反应关系,相关系数r为0.9218。 当DDT为1μ mol/L时,50nmTiO2组mRNA表达水平高于120nmTiO2组,差异具有统计学意义(P<0.05);当DDT为0、0.1、10μ mol/L时,50nmTiO2组mRNA表达水平高于120nmTiO2组,但未见显著性差异(P>0.05)。 Nano-TiO2与DDT联合染毒时,mRNA表达水平都分别比单独染毒明显增加,差异具有统计学意义(P<0.05或P<0.01)。通过二因子析因分析,二者混合染毒有交互作用(P<0.05)。 结论: 1 Nano-TiO2和DDT单独或联合作用时,可以使HepG2细胞受损,存活率降低。 2 Nano-TiO2和DDT单独或联合作用时,可以使HepG2细胞的抗氧化功能受损,机体出现氧化应激。 3 Nano-TiO2和DDT单独或联合作用时,可以诱导HepG2细胞发生DNA损伤。 4随着Nano-TiO2粒径的减小,对HepG2细胞的损伤作用有增强的趋势。 5 Nano-TiO2和DDT联合作用与Nano-TiO2或DDT单独作用相比,对HepG2细胞的损害作用有增加的趋势,表现为交互作用,但是否为协同效应需进一步深入研究。