布鲁氏菌病（Brucellosis）是由细胞内寄生的革兰氏阴性小杆菌布鲁氏菌引起的一种人畜共患病。它以发热，流产为主要症状，严重威胁着人畜健康。全世界每年出现500,000例人布鲁氏菌病，据美国农业部估计，仅在拉丁美洲布鲁氏菌病每年造成6亿美元的损失，而在九十年代的美国平均每年损失为1.5亿美元[5]。控制布鲁氏菌病的传播是最终消灭它的关键，除了大规模地宰杀感染动物以外，群体疫苗接种是十分重要的手段，目前主要用于牛羊布鲁氏菌病预防的是牛型19号疫苗以及羊型Rev.弱毒苗，但是免疫保护率只有65％～75％。而利用基因工程制备的疫苗有很多优点:1.制备方便快捷，造价低；2. 安全稳定，靶向性明确，用量易于控制；3.可以用多种方式进行免疫。本研究所选的L7/L12核蛋白为公认的T细胞保护性抗原，它具有高度的保守性，研究发现，重组L7/L12蛋白能特异性地刺激感染动物的单核细胞，并上调INF-γ的转录和表达，从而起到保护作用。以其为基础构建的重组蛋白苗和DNA疫苗都表现了较好的免疫保护效果；而OMP16外膜脂蛋白存在于所有6种布鲁氏菌中，也有一定的免疫保护作用；17.3kDa蛋白与布鲁氏菌18kDa的外膜蛋白（优秀的保护性抗原）的AA序列相似，因此，我们通过实验来验证17.3kDa蛋白是否具有保护作用。对翻译起始因子3蛋白进行抗原预测表明其具有免疫原性。本课题以4种蛋白分子为研究对象，分别构建了真核，原核表达质粒并表达了这4种蛋白，免疫动物后，研究其诱导产生的细胞免疫和体液免疫应答。从布鲁氏菌中提取其全基因组DNA，利用PCR技术扩增出4种蛋白的编码基因，测序正确后分别克隆至原核表达载体PET32a(+)上，经诱导表达出相应的4种重组蛋白，WB鉴定后纯化待用；同时，4种编码基因隆至真核表达载体PCDNA3.1(+)上，将重组质粒转染COS-7细胞后经WB证实重组质粒构建成功。将重组蛋白混合弗氏佐剂免疫动物，同时DNA疫苗以PUMVC1-mGM-CSF重组质粒为佐剂（各100μg/只）肌肉免疫动物；每15d免疫一次，加强免疫三次后检测免疫应答指标，并进行组间比较。ELISA法检测到较高滴度的特异性抗体，WB也证实特异性抗体的产生；抗体亚型分类表明重组蛋白组的特异性IgG1/ IgG2a大于1，而DNA疫苗免疫组却小于1，说明重组蛋白疫苗诱导产生了Th2型为主免疫应答，DNA疫苗产生了Th1型为主的免疫应答。MTS法测小鼠T淋巴细胞增殖试验发现DNA组小鼠脾脏T淋巴细胞对ConA诱导的增殖反应增强，而重组蛋白组却无显著变化。进一步通过ELISPOT方法检测特异性活化的可<WP=7>分泌IFN-γ的CD8+T细胞数，DNA免疫组的斑点数显著多于对照组（P＜0.05）；说明诱导了特异性CD8+T淋巴细胞应答。流式细胞仪所得到的淋巴细胞亚群分类也得到了同样的结果。本课题利用真核表达载体PCDNA3.1成功构建了含４种布鲁氏菌编码蛋白的重组质粒，并利用原核表达载体表达了相应的重组蛋白。通过ELISA﹑WB﹑ELISPOT及淋巴细胞亚群分类检测疫苗在免疫小鼠体内诱导产生的体液及细胞免疫指标。 本研究成功构建了布鲁氏菌基因工程疫苗，在国内尚属首次，利用流式细胞仪的分型技术和ELISPOT法评价布鲁氏菌疫苗的细胞免疫指标将促进我国兽用疫苗及相关产品的实验室质控标准方法的建立和发展，为他们的临床应用奠定基础。 进一步的攻毒实验尚在进行中。