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目的
建立猿肾病毒40大T抗原(SV40Tag)永生化尿源性干细胞，为组织工程学及再生医学提供稳定的细胞来源。
方法利用脂质体(Lipofectamine2000)介导将含SV40Tag基因质粒pMPH-FRT-SV40T及转座酶质粒(transposase)共转染至临床分离的尿源性干细胞中。潮霉素(Hygromycin)筛选后阳性细胞克隆并连续传代，观察细胞形态学以及增殖情况，RT-PCR，免疫荧光等检测转染细胞的生物学特性，细胞裸鼠皮下注射检测其安全性。
结果筛选获得的阳性克隆扩大培养，即永生化尿源性干细胞(immorterlized urine derived stem cell，iUSC)，增殖能力强，能连续传代培养。RT-PCR证实iUSC表达SV40Tag基因，而用翻转重组酶(Flippers recombination enzyme Flp)处理iUSC可敲除RFT-SV40Tag基因而逆转永生化。应用免疫荧光细胞化学技术检测该细胞株表达干细胞表面标志物CD73，CD44，CD90(Thy-1)，CD29(Integrin)，CD105(Endoglin)，CD166(ALCAM)，BMPR II，SSEA4，CD117，CD133；BMP9可诱导其分化为成骨细胞，脂肪细胞，具备干细胞多向分化能力；转染细胞2×106个/点接种裸鼠，连续观察4周无肿瘤形成。
结论脂质体转染技术成功构建SV40Tag永生化尿源性干细胞，该细胞株仍具有干细胞增殖及多向分化潜能，为组织工程学及再生医学的体外研究和发展应用提供了安全稳定的细胞来源。