论文部分内容阅读
【摘要】 目的:利用RNA干扰技术(RNAi)下调肌腱细胞中V型胶原蛋白的表达,拟为后续探讨V型胶原在损伤肌腱修复过程中的作用提供可行的试验方法。方法:分别设计干扰大鼠V型胶原[COL5( 1)2( 2)]两个亚基COL5 1和COL5 2表达的siRNA序列,转染大鼠肌腱细胞。通过实时荧光定量PCR和免疫荧光法检测V型胶原在基因和蛋白水平的表达。结果:转染特定的siRNA后,V型胶原两个亚基的基因表达被抑制约70%,蛋白表达也被明显抑制。结论:RNAi法可有效地抑制大鼠肌腱细胞中V型胶原的基因和蛋白水平表达。为进一步研究V型胶原在肌腱损伤修复过程中的作用提供了可行的试验方法。
【关键词】 肌腱细胞; V型胶原; RNA干扰技术; 基因表达
年龄增长和运动过度均可造成肌腱韧带损伤。目前临床上的治疗方法主要是理疗和手术缝合。由于肌腱韧带内细胞、血管较少,再生能力较差,所以愈后常由瘢痕组织修复,力学性能低下,易造成重复断裂。
V型胶原在正常肌腱组织中含量很少,但在损伤肌腱中却持续高表达52周[1]。有研究显示过多的V型胶原抑制I型胶原的自聚生长。培养抑制了V型胶原功能的纤维细胞(Ehlers-Danlos Syndrome),其所产生的Ⅰ型胶原纤维直径大于正常胶原纤维[2]。损伤肌腱修复后胶原纤维直径明显变小,而这些小直径纤维又与肌腱修复后力学性能低下相关[3-4]。所以降低V型胶原的表达可能有利于促进大直径胶原纤维的再生,提高损伤肌腱的修复效果。
RNA干扰技术(RNA interference,RNAi)是近年兴起的一种高效、特异阻断靶mRNA表达而达到转录后基因沉默的新技术。能够有效地抑制目的基因的表达,产生相应功能型缺失的现象,为研究特定基因功能提供良好的工具[5-6]。
本研究设计并合成干扰V型胶原两个亚基的siRNA,转染大鼠肌腱细胞,在基因和蛋白水平检测抑制效率,筛选得到有效的干扰片段,为后续研究V型胶原的功能提供细胞水平平台和可行的试验方法。
1 材料与方法
1.1 试剂 胰蛋白酶、胎牛血清(FBS)、DMEM培养基(Gibco);siRNA分子(Ambion)、LipofectamineTM2000转染试剂;mMLV逆转录试剂(Invitrogen)、real time PCR试剂盒(TaKaRa);V型胶原一抗(millpore)、荧光二抗。
1.2 仪器 二氧化碳培养箱;生物安全柜;倒置荧光电子显微镜(Olympus);Real-Time PCR仪(ABI 7900 HT)。
1.3 实验动物 Sprague-Dawley(SD)大鼠,雌雄不限,体重250 g左右。
1.4 方法
1.4.1 细胞培养 取大鼠跟腱,剥离肌腱腱膜,将组织块剪成匀浆状,用混合胶原酶消化后,加入含10%FBS的DMEM,37 ℃、5% CO2、饱和湿度条件下(标准环境)进行原代培养。4~5 d更换1次培养基。当细胞铺满培养皿底约90%时,用胰蛋白酶消化按1:3进行传代培养。取P5以内的细胞用于后续实验。
1.4.2 siRNA序列设计 由Ambion公司设计与合成siRNA干扰序列。由于V型胶原的分子组成为COL5( 1)2( 2),所以分别设计了针对COL5 1和COL5 2亚基的siRNA序列,为实验序列,见表1。并提供已知有效抑制GAPDH的siRNA作为阳性对照序列(positive control, PC),FAM绿色荧光标记的乱序siRNA为阴性对照序列(negative control, NC)。
1.4.3 基因转染 将处于对数生长期的大鼠肌腱细胞按5×104/孔的密度接种于12孔板中,培养20 h后,更换无FBS的培养基后进行转染。具体方法参照Lipofectamine TM2000转染试剂说明书。培养6 h后更换含FBS的培养基。
1.4.4 实时荧光定量PCR法检测基因干扰效率 肌腱细胞转染特定的siRNA48 h后,收集肌腱细胞,提取RNA,采用两步法完成反转录聚合酶链反应(RT-PCR)(n=3)。采用b-actin做内参,用实时荧光定量PCR法(real time PCR)定量分析COL5 1和COL5 2基因的表达,所用引物见表2。
1.4.5 免疫荧光法检测蛋白抑制效率 由于乱序的siRNA自身标记FAM绿色荧光,不能用作阴性对照,所以用只加转染试剂而不加任何siRNA的肌腱细胞作为对照组(Control)(n=3)。肌腱细胞转染72 h后,去掉培养基,PBS润洗,固定,加入稀释好的一抗,置于湿盒中4 ℃过夜(为扣除背景荧光,以不加一抗的肌腱细胞作为免疫荧光的方法学对照)。次日,PBS润洗,加入荧光标记的二抗,室温避光1 h。再次用PBS润洗,荧光电子显微镜下观察结果。
1.5 统计学处理 采用SPSS 11.5统计软件对数据进行处理,计量资料以(x±s)表示,比较采用t检验,以P<0.05为差异具有统计学意义。
2 结果
2.1 siRNA转染效率检测 体外培养肌腱细胞见图1A。转染特定的siRNA后,用荧光显微镜观察阴性对照组肌腱细胞,结果见图1B。肌腱细胞内充满绿色荧光,表明FAM标记的siRNA进入肌腱细胞内,转染效率较高。
注:体外培养大鼠肌腱细胞(图1A);转染FAM荧光标记siRNA的肌腱细胞(图1B)
2.2 靶向siRNA抑制V型胶原在mRNA水平的表达 肌腱细胞转染siRNA48 h后,用real time PCR法检测COL5 1和COL5 2在基因表达的水平,见图2。与阴性对照组(乱序siRNA)相比, 1(V)实验组(siRNA196227)有效抑制了肌腱细胞中COL5 1基因水平的表达, 2(V)实验组(siRNA s136862)有效抑制了肌腱细胞中COL5 2基因水平的表达。抑制程度约70%左右(P<0.05)。阳性对照组(抑制GAPDH的siRNA)有效抑制了GAPDH的表达(数据未展示)。设置阳性对照组目的为验证siRNA转染方法的有效性,见图2。 2.3 靶向siRNA抑制V型胶原在蛋白水平的表达 肌腱细胞转染siRNA72 h后,用免疫荧光法检测肌腱细胞中V型胶原蛋白水平的表达,见图3。 1(V)实验组(siRNA196227)有效抑制了肌腱细胞中Col5 1在蛋白水平的表达(图3A), 2(V)实验组(siRNAs136862)有效抑制了肌腱细胞中Col5 2在蛋白水平的表达(图3E)。
注: 1(V):实验组1(大鼠肌腱细胞转染siRNA196227); 2(V):实验组2(大鼠肌腱细胞转染siRNA s136862);PC:阳性对照(大鼠肌腱细胞转染干扰GAPDH的siRNA);NC:阴性对照(大鼠肌腱细胞转染FAM标记的乱序siRNA)(图2A,图2B)
注:V型胶原亚基Col5 1在蛋白水平的检测(图3A~3C);V型胶原亚基Col5 2在蛋白水平的检测(图3D~3F); 1(V):实验组1(大鼠肌腱细胞转染siRNA196227); 2(V):实验组2(大鼠肌腱细胞转染siRNA s136862);Control:空白对照组(大鼠肌腱细胞只加转染试剂,不加任何siRNA)
3 讨论
有研究表明损伤肌腱中V型胶原表达异常升高[1],且过多的V型胶原抑制I型胶原的自聚生长。本实验在体外培养大鼠肌腱细胞,利用RNAi法抑制肌腱细胞中V型胶原两个亚基COL5 1和COL5 2的表达。结果表明,化学合成的siRNA分子通过脂质体转染大鼠肌腱细胞后,有效抑制了COL5 1和COL5 2在基因水平的表达,V型胶原在蛋白水平的表达也明显降低。表明RNAi法可以有效抑制V型胶原在肌腱细胞中的表达。为后续研究V型胶原在肌腱损伤修复过程中的调节作用提供可行的试验方法。也为促进损伤肌腱再生,达到结构和功能的完全恢复带来潜在的基因治疗手段。
参考文献
[1] Frank C, McDonald D, Shrive N. Collagen fibril diameters in the rabbit medial collateral ligament scar: A longer term assessment [J]. Connect Tissue Res,1997,(36):261-269.
[2] Wenstrup R J, Florer J B, Cole W G, et al. Reduced type I collagen utilization: a pathogenic mechanism in COL5A1 haplo-insufficient Ehlers-Danlos syndrome [J]. J Cell Biochem, 2004,92(1):113-124.
[3] Goh J C, Ouyang H W, Toh S L, et al. Tissue engineering techniques in tendon and ligament replacement [J]. Med J Malaysia,2004,59(l):47-48.
[4] Hui J, Ouyang H W, Goh J, et al. Application of mesenchymal stem cell for musculoskeletal tissue engineering [J]. Ann SG Acad Med,2005,34(2):206-212.
[5] Fire A, Xu S, Montgomery M K, et al. Potent and specific genetic interference by double-stranded RNA in Caenorhabditiselegans [J]. Nature,1998,391(6669):806-811.
[6] Elbashir S M, Harborth J, Lendeckel W, et al. Duplexes of 21-nucleotide RNAs mediate RNA interference in culturedmammalian cells [J]. Nature,2001,411(6836):494-498.
(收稿日期:2013-05-20) (本文编辑:王宇)
【关键词】 肌腱细胞; V型胶原; RNA干扰技术; 基因表达
年龄增长和运动过度均可造成肌腱韧带损伤。目前临床上的治疗方法主要是理疗和手术缝合。由于肌腱韧带内细胞、血管较少,再生能力较差,所以愈后常由瘢痕组织修复,力学性能低下,易造成重复断裂。
V型胶原在正常肌腱组织中含量很少,但在损伤肌腱中却持续高表达52周[1]。有研究显示过多的V型胶原抑制I型胶原的自聚生长。培养抑制了V型胶原功能的纤维细胞(Ehlers-Danlos Syndrome),其所产生的Ⅰ型胶原纤维直径大于正常胶原纤维[2]。损伤肌腱修复后胶原纤维直径明显变小,而这些小直径纤维又与肌腱修复后力学性能低下相关[3-4]。所以降低V型胶原的表达可能有利于促进大直径胶原纤维的再生,提高损伤肌腱的修复效果。
RNA干扰技术(RNA interference,RNAi)是近年兴起的一种高效、特异阻断靶mRNA表达而达到转录后基因沉默的新技术。能够有效地抑制目的基因的表达,产生相应功能型缺失的现象,为研究特定基因功能提供良好的工具[5-6]。
本研究设计并合成干扰V型胶原两个亚基的siRNA,转染大鼠肌腱细胞,在基因和蛋白水平检测抑制效率,筛选得到有效的干扰片段,为后续研究V型胶原的功能提供细胞水平平台和可行的试验方法。
1 材料与方法
1.1 试剂 胰蛋白酶、胎牛血清(FBS)、DMEM培养基(Gibco);siRNA分子(Ambion)、LipofectamineTM2000转染试剂;mMLV逆转录试剂(Invitrogen)、real time PCR试剂盒(TaKaRa);V型胶原一抗(millpore)、荧光二抗。
1.2 仪器 二氧化碳培养箱;生物安全柜;倒置荧光电子显微镜(Olympus);Real-Time PCR仪(ABI 7900 HT)。
1.3 实验动物 Sprague-Dawley(SD)大鼠,雌雄不限,体重250 g左右。
1.4 方法
1.4.1 细胞培养 取大鼠跟腱,剥离肌腱腱膜,将组织块剪成匀浆状,用混合胶原酶消化后,加入含10%FBS的DMEM,37 ℃、5% CO2、饱和湿度条件下(标准环境)进行原代培养。4~5 d更换1次培养基。当细胞铺满培养皿底约90%时,用胰蛋白酶消化按1:3进行传代培养。取P5以内的细胞用于后续实验。
1.4.2 siRNA序列设计 由Ambion公司设计与合成siRNA干扰序列。由于V型胶原的分子组成为COL5( 1)2( 2),所以分别设计了针对COL5 1和COL5 2亚基的siRNA序列,为实验序列,见表1。并提供已知有效抑制GAPDH的siRNA作为阳性对照序列(positive control, PC),FAM绿色荧光标记的乱序siRNA为阴性对照序列(negative control, NC)。
1.4.3 基因转染 将处于对数生长期的大鼠肌腱细胞按5×104/孔的密度接种于12孔板中,培养20 h后,更换无FBS的培养基后进行转染。具体方法参照Lipofectamine TM2000转染试剂说明书。培养6 h后更换含FBS的培养基。
1.4.4 实时荧光定量PCR法检测基因干扰效率 肌腱细胞转染特定的siRNA48 h后,收集肌腱细胞,提取RNA,采用两步法完成反转录聚合酶链反应(RT-PCR)(n=3)。采用b-actin做内参,用实时荧光定量PCR法(real time PCR)定量分析COL5 1和COL5 2基因的表达,所用引物见表2。
1.4.5 免疫荧光法检测蛋白抑制效率 由于乱序的siRNA自身标记FAM绿色荧光,不能用作阴性对照,所以用只加转染试剂而不加任何siRNA的肌腱细胞作为对照组(Control)(n=3)。肌腱细胞转染72 h后,去掉培养基,PBS润洗,固定,加入稀释好的一抗,置于湿盒中4 ℃过夜(为扣除背景荧光,以不加一抗的肌腱细胞作为免疫荧光的方法学对照)。次日,PBS润洗,加入荧光标记的二抗,室温避光1 h。再次用PBS润洗,荧光电子显微镜下观察结果。
1.5 统计学处理 采用SPSS 11.5统计软件对数据进行处理,计量资料以(x±s)表示,比较采用t检验,以P<0.05为差异具有统计学意义。
2 结果
2.1 siRNA转染效率检测 体外培养肌腱细胞见图1A。转染特定的siRNA后,用荧光显微镜观察阴性对照组肌腱细胞,结果见图1B。肌腱细胞内充满绿色荧光,表明FAM标记的siRNA进入肌腱细胞内,转染效率较高。
注:体外培养大鼠肌腱细胞(图1A);转染FAM荧光标记siRNA的肌腱细胞(图1B)
2.2 靶向siRNA抑制V型胶原在mRNA水平的表达 肌腱细胞转染siRNA48 h后,用real time PCR法检测COL5 1和COL5 2在基因表达的水平,见图2。与阴性对照组(乱序siRNA)相比, 1(V)实验组(siRNA196227)有效抑制了肌腱细胞中COL5 1基因水平的表达, 2(V)实验组(siRNA s136862)有效抑制了肌腱细胞中COL5 2基因水平的表达。抑制程度约70%左右(P<0.05)。阳性对照组(抑制GAPDH的siRNA)有效抑制了GAPDH的表达(数据未展示)。设置阳性对照组目的为验证siRNA转染方法的有效性,见图2。 2.3 靶向siRNA抑制V型胶原在蛋白水平的表达 肌腱细胞转染siRNA72 h后,用免疫荧光法检测肌腱细胞中V型胶原蛋白水平的表达,见图3。 1(V)实验组(siRNA196227)有效抑制了肌腱细胞中Col5 1在蛋白水平的表达(图3A), 2(V)实验组(siRNAs136862)有效抑制了肌腱细胞中Col5 2在蛋白水平的表达(图3E)。
注: 1(V):实验组1(大鼠肌腱细胞转染siRNA196227); 2(V):实验组2(大鼠肌腱细胞转染siRNA s136862);PC:阳性对照(大鼠肌腱细胞转染干扰GAPDH的siRNA);NC:阴性对照(大鼠肌腱细胞转染FAM标记的乱序siRNA)(图2A,图2B)
注:V型胶原亚基Col5 1在蛋白水平的检测(图3A~3C);V型胶原亚基Col5 2在蛋白水平的检测(图3D~3F); 1(V):实验组1(大鼠肌腱细胞转染siRNA196227); 2(V):实验组2(大鼠肌腱细胞转染siRNA s136862);Control:空白对照组(大鼠肌腱细胞只加转染试剂,不加任何siRNA)
3 讨论
有研究表明损伤肌腱中V型胶原表达异常升高[1],且过多的V型胶原抑制I型胶原的自聚生长。本实验在体外培养大鼠肌腱细胞,利用RNAi法抑制肌腱细胞中V型胶原两个亚基COL5 1和COL5 2的表达。结果表明,化学合成的siRNA分子通过脂质体转染大鼠肌腱细胞后,有效抑制了COL5 1和COL5 2在基因水平的表达,V型胶原在蛋白水平的表达也明显降低。表明RNAi法可以有效抑制V型胶原在肌腱细胞中的表达。为后续研究V型胶原在肌腱损伤修复过程中的调节作用提供可行的试验方法。也为促进损伤肌腱再生,达到结构和功能的完全恢复带来潜在的基因治疗手段。
参考文献
[1] Frank C, McDonald D, Shrive N. Collagen fibril diameters in the rabbit medial collateral ligament scar: A longer term assessment [J]. Connect Tissue Res,1997,(36):261-269.
[2] Wenstrup R J, Florer J B, Cole W G, et al. Reduced type I collagen utilization: a pathogenic mechanism in COL5A1 haplo-insufficient Ehlers-Danlos syndrome [J]. J Cell Biochem, 2004,92(1):113-124.
[3] Goh J C, Ouyang H W, Toh S L, et al. Tissue engineering techniques in tendon and ligament replacement [J]. Med J Malaysia,2004,59(l):47-48.
[4] Hui J, Ouyang H W, Goh J, et al. Application of mesenchymal stem cell for musculoskeletal tissue engineering [J]. Ann SG Acad Med,2005,34(2):206-212.
[5] Fire A, Xu S, Montgomery M K, et al. Potent and specific genetic interference by double-stranded RNA in Caenorhabditiselegans [J]. Nature,1998,391(6669):806-811.
[6] Elbashir S M, Harborth J, Lendeckel W, et al. Duplexes of 21-nucleotide RNAs mediate RNA interference in culturedmammalian cells [J]. Nature,2001,411(6836):494-498.
(收稿日期:2013-05-20) (本文编辑:王宇)