Saccharomonospora viridis α-葡萄糖苷酶基因的功能鉴定及分子改造

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α-葡萄糖苷酶(α-glucosidase,EC3.2.1.20)是一类从含有α-糖苷键底物的非还原末端催化水解α-葡萄糖基酶的总称。该酶是工业上生产低聚异麦芽糖的关键酶制剂,低聚异麦芽糖是一种功能性低聚糖,具有良好的促进双歧杆菌生长、降低血脂和抗龋齿等生物性功能,已广泛应用于食品、医药等领域。因此,α-葡萄糖苷酶在低聚异麦芽糖的工业生产上受到了极度的关注。   本研究利用PCR的方法从绿色糖单孢菌(S.viridis)中克隆到一个假定为糖苷酶的ORF,并成功在E.coli Rossetta(DE3)中进行表达,研究表明该ORF是编码一种α-葡萄糖苷酶。利用镍柱将重组酶pSE380-Svg进行纯化,SDS-PAGE电泳检测纯化的目的蛋白条带约为53 kD。重组酶作用于对硝基苯基-α-D-葡萄糖苷(pNPG)和蔗糖的最适温度分别为45℃和50℃,最适pH均为7.5,Km值分别为2.32 mmol/L和6.05 mmol/L,比活力分别为911.68 U/mg和189.80 U/mg。该酶能够水解pNPG、蔗糖、麦芽糖和麦芽三糖,但不能水解海藻糖、α-环糊精、β-环糊精、普鲁兰糖、可溶性淀粉、糯米淀粉。   本研究还通过SWISS-MODEL网站对S.viridisα-葡萄糖苷酶进行同源建模,以Pseudomonas mesoacidophila的蔗糖异构酶(2pwfD)为模板进行比对分析,确定了活性位点入口附近的F282、W260和R266进行定点饱和突变,以期提高α-葡萄糖苷酶的酶活力或改变产物特异性。通过反向PCR和突变体库的构建,从中筛选到三个有活力的突变体:F282L、R2661和R266Y。利用底物pNPG对突变酶进行酶学性质研究发现,与野生酶相比较,突变酶的比活力大大的降低,最适pH均没有发生改变;突变酶F282L和R266Y的最适温度分别升高和降低了5℃,而R2661的最适温度却没有发生变化;突变酶R266Y的Km比野生酶的有所降低,这说明其与底物pNPG的亲和力加强了,其余两个突变酶的Km都有所升高而降低了与底物pNPG的亲和力。HPLC分析结果表明,突变酶和野生酶分别与10%麦芽糖作用,均发生了一定转糖苷反应,但突变酶的转糖苷活力均比野生酶的低,并且产物并没有发生改变。
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