本工作建立一种芯片毛细管电泳电化学检测肿瘤标记物和DNA的方法。通过邻氨基酚-过氧化氢-辣根过氧化物酶（OAP-H₂O₂-HRP）体系,利用芯片毛细管电泳电化学检测技术分离检测了肿瘤标记物和DNA。第一章为绪论,简要介绍了芯片毛细管电泳,并就当前微流控分析中常用的电化学检测方法做了简要综述。介绍了芯片毛细管电泳发展和研究现状。第二章介绍了PDMS/玻璃复合芯片及电极的设计与加工。该复合芯片由玻璃基底和PDMS芯片构成。本章简要介绍了PDMS芯片的加工以及玻璃基片上电极的设计和加工过程。第三章对芯片毛细管电泳邻氨基酚（OAP）- H₂O₂-辣根过氧化物酶（HRP）酶联免疫分析体系进行了较为详细地研究,在最佳反应条件下,测定游离HRP的线性范围为4.5×10^-9 7.8×10^-13 mol/L,检测限为1.6×10^-13 mol/L（S/N = 3）。第四章利用芯片毛细管电泳邻氨基酚（OAP）- H₂O₂-辣根过氧化物酶（HRP）酶联免疫分析体系电化学检测了甲胎蛋白（AFP）和人绒毛膜促性腺激素（HCG）。此方法成功地用于甲胎蛋白（AFP）和人绒毛膜促性腺激素（HCG）的检测。AFP和HCG线性范围分别为1.5⁶6.6 ng/mL和1.7¹32.5 ng/mL,检测限分别为0.48 ng/mL和0.30 ng/mL。第五章利用芯片毛细管电泳邻氨基酚（OAP）- H₂O₂-辣根过氧化物酶（HRP）酶联免疫分析体系电化学检测了27个、39个碱基的靶DNA。此方法利用生物素修饰的DNA与亲核素修饰的辣根过氧化酶（avidin–HRP）反应形成HRP标记的DNA探针,之后与它的互补DNA链杂交。杂交反应后,混合物包括HRP标记的双链DNA（dsDNA-HRP）,过量的HRP标记的单链DNA（ssDNA-HRP）和剩余的亲核素修饰的辣根过氧化酶（avidin–HRP）,最后通过芯片毛细管电泳进行分离。该方法成功的分离检测了27个,39个碱基的靶DNA,它们的线性范围分别为3.0×10^-11 -1.8×10^-9 mol/L和4.0×10^-11 -1.4×10^-9 mol/L,检测限分别为8×10^-12mol/L和1.2×10^-11 mol/L;并对大场杆菌基因组DNA的PCR产物进行了分离检测。