三聚氰胺完全抗原的合成及其免疫效应分析

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三聚氰胺(melamine,MEL)属于食品和饲料中的非法添加物,并且它可以从环境或食品包装材料等途径导致食品和饲料的污染。MEL具有一定的细胞毒性、急性毒性、慢性毒性和致敏性,人和动物体长期摄入MEL会对泌尿、生殖系统造成损伤,对此很多国家都设立了食品和饲料中MEL的限量标准。所以,开发相应的MEL检测方法就非常重要和必要。与很多仪器分析方法相比,酶联免疫吸附测定(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)分析法因具有检测低成本、快速、灵敏、适用于现场检测等优点而被广泛应用于MEL的检测,而合成MEL完全抗原并用其免疫实验动物以制备出高效价、高灵敏度和特异性强的抗体是建立ELISA方法的重要前提。  为了合成优质的MEL抗原并探求便捷有效的MEL完全抗原合成方法及抗原鉴定方法,以用于MEL的ELISA试剂盒研发,本研究合成了一种MEL衍生物,并用其与载体蛋白偶联以制备MEL人工完全抗原,通过十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳(sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis,SDS-PAGE)和紫外光谱(ultraviolet spectrum,UV)法对完全抗原进行了鉴定,同时对UV检测条件进行了优化;之后采用两种MEL完全抗原分别免疫两组BALB/c小鼠,通过ELISA方法对抗血清的效价、灵敏度和特异性进行了评价,具体研究内容与结果如下:  1.MEL衍生物DTBA的合成与鉴定  通过MEL的结构类似物2-氯-4,6-二氨基-1,3,5-三嗪(2-chloro-4,6-diamino-1,3,5-triazine,CDAT)与γ-氨基丁酸(gamma-aminobutyric acid,GABA)反应合成了MEL的衍生物4-亚氨基-(4,6-二氨基-1,3,5-三嗪)丁酸(4-(4,6-diamino-1,3,5-triazin-ylamino)butanoic acid,DTBA),通过高效液相色谱(high performance liquid chromatography,HPLC)法、质谱(mass spectrometry,MS)法和UV法和红外光谱(infrared spectrum,IR)法对DTBA进行了分析鉴定,结果表明:在参照国家标准GB/T22400—2008中检测MEL的类似色谱条件下,MEL、CDAT和DTBA的保留时间分别为5.408min、1.730min和4.364min;一级质谱、二级质谱和三级质谱中给出的分子量信息和结构信息都证明DTBA合成成功;DTBA在212nm处和237nm处有特征紫外吸收峰,与MEL的紫外吸收光谱类似;而DTBA的红外光谱特征吸收峰在12.8μm(781.57cm-1)和2.99μm(3348.85cm-1)处。  2.MEL人工完全抗原的合成与鉴定  采用碳二亚胺(carbodiimide,CDI)法将 DTBA分别与牛血清白蛋白(bovine serum albumin,BSA)、阳离子牛血清白蛋白(cationized BSA,cBSA)、卵清蛋白(ovalbumin,OVA)和多聚赖氨酸(polylysine,PLP)偶联,合成了DTBA-BSA、DTBA-cBSA、DTBA-OVA和DTBA-PLP四种MEL人工完全抗原,通过SDS-PAGE法和UV法对MEL完全抗原进行了分析鉴定。其中,SDS-PAGE难以区分出DTBA-BSA、DTBA-OVA和DTBA-PLP与其各自载体蛋白对照的差别,而对UV法的扫描条件进行优化后则能够通过紫外光谱图对四种MEL完全抗原进行鉴定,证明人工完全抗原合成成功。  3.抗MEL抗血清的制备及其性质分析  以DTBA-BSA和DTBA-cBSA作为免疫抗原,分别免疫两组BALB/c小鼠,每组3只,免疫剂量均为100μg/只(以蛋白质含量计算),首次免疫间隔时间为21d,后续各次免疫间隔时间为14d,分别在首次免疫后第10d以及后续各次免疫后第7d分别对小鼠采血、收集血清。通过ELISA方法对抗体产生进程、抗血清效价、灵敏度及特异性进行了评价,结果表明:6只BALB/c小鼠经3次免疫后都能够对抗原产生的免疫应答,免疫应答水平总体趋势一致,不同小鼠的免疫应答存在着一定个体差异;当采用DTBA-OVA为包被抗原时,6只小鼠的抗血清效价可以达到1.28×104至1.024×105,效价较高;当采用DTBA-PLP作为包被抗原时,抗血清效价介于2×102至6.4×103之间,效价较低;间接竞争ELISA实验中,竞争抗原MEL和DTBA对6只小鼠抗血清的竞争抑制率均在90%以上,说明抗血清对MEL和DTBA没有灵敏度。此后,通过抗血清的特异性实验对没有灵敏度的原因进行了分析,结果表明很可能是因为免疫抗原中DTBA与载体蛋白的偶联摩尔比较低、没有诱发小鼠产生针对DTBA的特异性抗体所致。
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