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目的：通过应用不同浓度的氯化镉（cadmium chloride，CdCl2）孵育小鼠骨髓间充质干细胞（bone marrow mesenchymal stem cells，BMSCs），观察细胞形态及增殖情况，筛选出CdCl2抑制BMSCs生长的最佳浓度及时间；应用补益中药熟地（rehmannia glutinosa）及肉苁蓉（desertliving cistanche）超滤膜提取物作用于CdCl2诱导的BMSCs，探讨熟地及肉苁蓉对BMSCs的遗传稳定性及凋亡的作用，为中药联合BMSCs的临床应用提供实验依据。 方法：用含有50umol/L、100 umol/L、200 umol/L、400 umol/L、800 umol/L CdCl2的DMEM-F12培养液作用于密度为1×104个/mL的小鼠BMSCs24 h、48 h、72 h，通过倒置相差显微镜观察不同浓度 CdCl2诱导小鼠BMSCs的细胞形态，用MTT法检测CdCl2抑制小鼠BMSCs细胞的增殖情况，筛选出最佳作用浓度及时间,同时设正常BMSCs对照组。用水提法结合超滤法制备熟地、肉苁蓉不同分子量段提取物：分子量10,000以下、10,000-100,000及100,000-200,000三部分；将实验一筛选所得最佳CdCl2浓度作用于BMSCs，随机分为CdCl2诱导的BMSCs染毒模型组，熟地、肉苁蓉各段提取物干预组，作用24h，通过微核实验、染色体分析及流式细胞仪分别观察CdCl2对BMSCs细胞微核率、染色体畸变率及细胞凋亡的影响。 结果：实验结果提示浓度50-800 umol/L的CdCl2可对BMSCs有明显的抑制作用，通过改良寇氏法计算IC50确定出CdCl2对BMSCs抑制作用最佳的浓度为400 umol/L，最佳作用时间为24h。显微镜下观察，对照组细胞呈成纤维细胞样贴壁生长，胞体透亮，折光性强；CdCl2诱导组细胞呈凸起回缩，细胞变小、变圆，贴壁不牢，悬浮细胞增多。通过微核实验观察细胞微核数及计算细胞微核率发现，与对照组比较，分子量10,000以下、10,000-100,000、100,000-200,000的熟地及肉苁蓉超滤膜提取物均可以减小CdCl2诱导的BMSCs微核数及微核率，均以分子量10,000以下提取物效果最为明显（p<0.05）；与不加中药有效成分的对照组相比差异均具显著性（p<0.05）。通过染色体分析观察细胞染色体畸变率发现，与对照组比较，分子量10,000以下、10,000-100,000、100,000-200,000的熟地及肉苁蓉超滤膜提取物均可以减小 CdCl2诱导的BMSCs染色体畸变率的发生，均以分子量10,000以下提取物效果最为明显（p<0.05）；与不加中药有效成分的对照组相比差异均具显著性（p<0.05）。通过流式细胞术测试细胞凋亡发现，与对照组比较，分子量10,000以下、10,000-100,000、100,000-200,000的熟地及肉苁蓉超滤膜提取物组均可以降低CdCl2诱导的BMSCs的凋亡率，其中在各组肉苁蓉超滤膜提取物中以分子量10,000以下提取物效果最明显（p<0.05）；与不加中药有效成分的对照组相比差异均具显著性（p<0.05）。 结论：本研究发现 CdCl2可以诱导 BMSCs出现细胞微核和染色体畸变以及细胞的凋亡，可以导致BMSCs遗传物质损伤，中药熟地和肉苁蓉提取物可以通过减少细胞的凋亡来降低BMSCs的微核率和染色体畸变率，以提高BMSCs的遗传稳定性。