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目的 研究大鼠骨髓间充质干细胞(mesenchymal stem cells,MSCs)对单个核细胞体外活化增殖的免疫调节作用,并初步探讨MSCs的免疫调节机制.方法 从大鼠骨髓中分离培养间充质干细胞,通过瑞氏-姬姆萨染色进行形态学观察,应用流式细胞术检测以鉴定其细胞表面特征.以刀豆蛋白A(ConA)为刺激源,用MTT法测定单个核细胞(mononuclearcell,MNC)增殖指数,检测不同数量(1×104、2×104、8×104) MSCs在加入或不加入TGF-β1中和抗体的情况下对MNC增殖指数的影响.用Rt-PCR技术和ELISA技术分别检测MSCs的TGF-β1 mRNA的表达,以及72小时培养上清中TGF-β1的含量.用流式细胞技术分析单独培养或与MSCs共培养的MNC中CD4+CD25+T细胞比例的差异,并用Rt-PCR技术检测CD4+CD25+调节性T细胞的特异性标志Foxp3 mRNA表达量的差异.结果 当MSCs数量为1×104、2×104、8×104时MNC的增殖指数同对照组相比明显降低,而且MSCs数量越多MNC的增殖指数下降越明显(P<0.05),但在加入TGF-β1中和抗体的实验组增殖指数可部分恢复.Rt-PCR和ELISA实验结果显示,MSCs表达较高水平的TGF-β1.流式细胞结果显示,在MSCs存在的条件下,MNC中的CD4+CD25+T细胞亚群比例明显高于单独培养组(P<0.05),且Foxp3 mRNA的表达量也明显高于单独培养组(P<0.05).结论 MSCs能够抑制ConA刺激的单个核细胞体外增殖,而且呈数量依赖性.这种抑制作用至少部分是通过分泌TGF-β1介导的,并与上调MNC中CD4+CD25+调节性T细胞比例有关.这可以部分解释MSCs对移植物抗宿主病(graft versus hostdisease,GVHD)以及自身免疫病的免疫调节作用,因此,本实验通过初步研究MSCs的免疫调节机制,为MSCs的临床应用提供了一定的科学依据.